Original
Etiología
de la Mastitis bovina en Zamora-Chinchipe, Ecuador
Etiology of
Cattle Mastitis in Zamora-Chinchipe, Ecuador
Natacha Ramírez-Sanmartín *
*Universidad Nacional de Loja (UNL), Ecuador.
**Universidad
Técnica Particular de Loja (UTPL), Ecuador.
***Centro Nacional
de Sanidad Agropecuaria (CENSA), Apartado 10, San José de las Lajas, Mayabeque, Cuba.
Correspondencia: percedo.mi@gmail.com
Recibido:
Julio, 2023; Aceptado: Agosto, 2023; Publicado: Septiembre, 2023.
Antecedentes: La
mastitis bovina, problema sanitario y económico a nivel global, tiene
implicaciones para la salud animal y humana. Numerosos microorganismos
involucrados en su etiología complican su prevención y control, como Mycoplasma bovis. Objetivo. Profundizar
en la etiología bacteriana de la mastitis bovina en Zamora-Chinchipe, Ecuador,
en cuyos rebaños se constató previamente la presencia de Mollicutes en leche de tanque. Materiales y métodos: Durante 2015 y 2016 se muestrearon 247 vacas en
ordeño de rebaños bovinos lecheros en la
provincia Zamora-Chinchipe, seleccionados en los conglomerados definidos en el
territorio según sus características ecológicas. Las muestras de leche de cada
vaca se investigaron mediante Prueba California para Mastitis (CMT), y para el
diagnóstico microbiológico de Mollicutes se realizó
Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR), así como el diagnóstico
bacteriológico para la identificación de otros patógenos. Mediante comparación de proporciones se analizaron los
resultados del diagnóstico de Mollicutes y CMT en vacas por cantones y entre los patógenos
identificados en las vacas positivas a Mollicutes. A
través de Chi Cuadrado se evaluó la relación entre los resultados del
diagnóstico de Mollicutes y CMT, y de los patógenos
identificados, y por regresión logística se comparó su Razón de Prevalencia
(RP). Resultados: Se encontró elevada frecuencia de mastitis subclínica (81.4%) mediante CMT y una frecuencia de 33,2 % de vacas positivas a Mycoplasma spp.
En el diagnóstico bacteriológico Streptococcus spp. (27,2%) y Staphylococcus aureus (22,1%) tuvieron las mayores frecuencias (P< 0,05). S. aureus
se detectó con la mayor frecuencia en
vacas positivas a Mycoplasma
spp. (43,8%;
P<0,05). Conclusiones: Se destaca la importancia de
la elevada coinfección de Mycoplasma spp.
y S. aureus por su repercusión potencial en el
comportamiento clínico-epidemiológico de la mastitis bovina en la provincia.
Palabras clave: Mastitis Bovina, Mollicutes, Mycoplasma, PCR, Staphylococcus (Fuente: MeSH)
Background: Cattle mastitis is
a global sanitary and economic problem that affects human and animal health.
Several microorganisms involved in its etiology, such as Mycoplasma bovis, make prevention and control more
difficult. Aim. To deepen the bacterial etiology of cattle mastitis in
Zamora-Chinchipe, Ecuador, where collected milk was observed to have Mollicutes. Materials and methods: A number of 247
milking cows were studied in 2015-2016 in herds from Zamora-Chinchipe province,
selected in areas with adequate ecological characteristics. The California
Mastitis Test (CMT) was run on milk samples from each cow whereas Polymerase
Chain Reaction (PCR) was performed to detect Mollicutes,
and a bacteriological diagnostic was made to identify other pathogens. A
comparison of proportions analysis was conducted to analyze the results of Mollicute presence, and CMT in the cows per cantons, and
between the pathogens identified in the Mollicute-positive
cows. Chi-square helped evaluate the relation between the Mollicute
diagnostic results and CMT, and the pathogens identified. Logistic regression
was useful to compare the prevalence ratio (PR). Results: The frequency
of subclinical mastitis was found at high levels (81.4%)
through CMT, and a frequency of 33.2% of Mycoplasma spp.-positive
cows. In the bacteriological diagnostic, Streptococcus spp. (27.2%) and Staphylococcus
aureus (22.1%) showed the highest
frequencies (P< 0.05). S. aureus was detected with the highest
frequency in the Mycoplasma spp.-positive cows (43.8%;
P<0.05). Conclusions: The high infection caused by Mycoplasma
spp. and S. aureus was significant, due to their potential repercussion
on the clinical-epidemiological behavior of bovine mastitis in the province.
Key words: Bovine
mastitis, Mollicutes, Mycoplasma, PCR,
Staphylococcus (Source: Mesh)
INTRODUCCIÓN
La mastitis bovina
es una enfermedad
compleja y multifactorial, dada por la inflamación del parénquima de las
glándulas mamarias y los cambios patológicos que induce en sus tejidos, además
de modificaciones biológicas, físicas y químicas en la leche, que ocasionan cambios en su
composición y afectación a gran variedad de productos lácteos, además de
reducir la producción de leche (Barreiro et al. 2017). Se reconoce como la enfermedad más común y costosa de la lechería a escala
global y una de las principales causas de perjuicios a la eficiencia biológica
y la fertilidad del ganado de leche (Dalanezi et al., 2020;
Fernandes et al., 2021; Singh et al., 2023).
La mastitis
también constituye un problema de salud pública, por los riesgos de transmisión
a través de la leche de microorganismos zoonóticos y de patógenos con
resistencia a los antimicrobianos, debido a su amplio y/o indebido uso para el
control de la enfermedad (Paramasivam et
al., 2023).
Entre los
patógenos causantes de mastitis se incluyen Staphylococcus aureus, Streptococcus agalactiae, Actinomyces pyogenes, Streptococcus dysgalactiae, Corynebacterium bovis, enterobacterias como Escherichia coli, Klebsiella spp. y Enterobacter spp. y Mycoplasma spp., entre otros (Cameron et al., 2017).
La
preocupación por el carácter emergente de Mycoplasma bovis por el aumento de países que reportan su presencia en
los últimos años (Citti y Blanchard, 2013; Ruegg et al., 2017) y el diagnóstico de
Mollicutes en leche de tanque de rebaños bovinos
(25,8%, 37/143) en la provincia Zamora-Chinchipe, Ecuador, aunque no se
confirmó M. bovis
(Ramírez et al.,
2017), destaca la importancia de profundizar en la etiología bacteriana
asociada con vistas al control de la enfermedad en sus rebaños.
MATERIALES Y MÉTODOS
Durante 2015
y 2016 se muestrearon 247 vacas en ordeño de rebaños bovinos lecheros en la
provincia Zamora-Chinchipe, seleccionados en los conglomerados
definidos en el territorio según sus características ecológicas (Saa et al., 2012).
Luego del despunte del pezón se depositó un pool de 2
ml de leche de todos los cuartos en los pocillos de la paleta indicada para
esta prueba, a los que se agregó igual volumen del reactivo para la Prueba
California para Mastitis (CMT, de sus siglas en inglés, Lauril
sulfato de sodio al 4% Diagnóstico Mastitis Nocar, Medick). Se homogenizó la muestra con movimientos
circulares por un tiempo aproximado de 10 a 20 segundos, e inmediatamente se
interpretaron los resultados de acuerdo al grado de gelificación
observado en la mezcla (Blowey y Edmonson,
2010).
Diagnóstico
microbiológico
Después de descartar los primeros chorros de
leche de cada pezón, se colectó en tubos estériles un pool de 10mL de leche
proveniente de todos los cuartos, previa su limpieza
exhaustiva y desinfección con etanol al 70 % (NMC, 2014).
Todas las
muestras de leche se refrigeraron (2-8oC) para su traslado al
Laboratorio de Sanidad Animal y Zoonosis, de la Universidad Técnica Particular
de Loja, donde se conservaron a 4ºC para posteriores análisis microbiológicos.
Diagnóstico de Mycoplasma spp. en muestras de leche
La detección de Mycoplasma spp. se realizó mediante la Reacción en
Cadena de la Polimerasa (PCR), en MYCOLAB (Laboratorio
Acreditado por la ISO/IEC: 17025, y de Referencia de la Organización Mundial de
Salud Animal (OMSA) para el diagnóstico de Mycoplasmas,
del Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria (CENSA), Cuba.
Para la detección de Mollicutes por PCR se utilizó la pareja de cebadores MGSO y GPO-1, que
amplifican un fragmento de 270 pb correspondiente a
la región conservada del ARN ribosomal 16S (ARNr 16S) (Van Kuppeveld
et al., 1998). Los cebadores se
sintetizaron en el Centro de Ingeniería Genética y Biotecnología (CIGB), La
Habana, Cuba. Como control positivo se utilizó ADN de Mycoplasma arginini.
La muestra de leche se centrifugó (3000 rpm por 10
minutos) y el sobrenadante se decantó. Posteriormente se tomaron 50uL del
sedimento y se le adicionó 200 µL de buffer de ruptura (Tris HCl, 0,1M, pH 8,5, Tween 20,
0,05% y proteinasa K 0,24mg/mL).
La mezcla se incubó durante 1 hora a 60 ºC y luego de
ese periodo se incubó a 95ºC durante 15 minutos con el objetivo de lograr la
desnaturalización del ADN (Rossetti et al., 2010).
Preparación de la mezcla, condiciones de corrida y
visualización de los productos de PCR
La
preparación de la mezcla para la amplificación se realizó en un volumen final
de 25 μL. Esta mezcla se compuso de 5 µL del ADN
de la muestra, 1,5µL de cada cebador (20 pmoles) y 17
μL de Master mix (Promega).
Las reacciones se desarrollaron en un equipo Termociclador
de ADN REACTOR ThermoHyBaidTM, con el
empleo del programa de amplificación específico para cada cebador, según lo
descrito por los autores antes mencionados.
Los
productos se aplicaron en gel de agarosa al 2 % (v/v). Se utilizó un marcador
de peso molecular de 100 pb (Promega,
Madison, EE.UU.). El gel se tiñó con Bromuro de Etidio
(0,5 μg/mL) durante 15
minutos y los resultados se visualizaron en un transiluminador
de luz ultravioleta.
Diagnóstico
bacteriológico
La
identificación bacteriana en las muestras se realizó mediante la siembra de
15μL de leche y por agotamiento en placas Petri, las que se prepararon
previamente con agar MacConkey, Salt Mannitol y Agar Sangre (Becton Dickinson-Difco BBLTM), y Agar chocolate. Todas
se incubaron de 24 a 48 horas a 37°C (NMC, 2014).
Además, se realizaron las pruebas de hidrólisis de esculina, hipurato e inulina y crecimiento en cloruro de sodio (NaCl). A los aislados que mostraron bacilos Gram negativos
en la tinción de Gram se les realizó la prueba preliminar de lectura inmediata
Oxidasa y también se incluyeron las pruebas indol,
triple azúcar, urea y citrato (Fernández et
al., 2010).
Análisis estadístico
Mediante comparación de proporciones
(Castillo y Miranda, 2014) se analizaron los resultados del diagnóstico de Mollicutes y CMT en vacas por cantones y las frecuencias de los diferentes
patógenos identificados en las vacas positivas a Mollicutes.
A través de Chi Cuadrado se evaluó la relación entre los resultados del
diagnóstico de Mollicutes y CMT, así como con los
patógenos identificados en el estudio bacteriológico. También mediante
regresión logística se comparó la Razón de Prevalencia (RP) de cada patógeno
identificado por bacteriología (Corp
I, 2012).
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
En la
investigación a 247 muestras de leche de vacas, resultaron positivas a CMT 201 vacas (81.4%), lo que demuestra la
elevada frecuencia de mastitis subclínica (MSC) en los rebaños lecheros de la
provincia. También se constató un 33.2% (82/247) de vacas positivas a Mollicutes (Tabla 1).
En Paquisha y Yacuambí
no se detectaron vacas positivas a Mollicutes, pero
sí a CMT, aunque en ambos cantones se investigó un número inferior de animales
con respecto al resto de los cantones ante la reticencia de los productores.
En Sao Paulo se encontró un 16.4%
(11/67) de rebaños positivos a Mollicutes; solo uno
fue positivo a M. bovis
(Manzi et al.,
2018), pero se supone la participación de otras especies de micoplasmas
que pueden causar mastitis. Si bien M. bovis se considera una de las especies más patógenas y
la más frecuentemente aislada a partir de neumonías, artritis y mastitis
causadas por ese género en el ganado vacuno, existen otras especies, como M. californicum,
M. canadense,
M. bovigenitalium,
M. alkalescens,
M. arginini,
M. bovirhinis
y M. dispar que pueden causar
infecciones en bovinos lecheros (Deeney et
al., 2021).
En Zamora-Chinchipe tampoco se
identificó M. bovis
en leche de tanque positivas a Mollicutes, y también
se considera la participación de otras especies de micoplasmas
(Ramírez et al., 2017).
La no asociación entre los resultados a CMT y Mollicutes
mediante Chi Cuadrado (p<0,05), se puede deber a la evidente
participación de otros patógenos en la etiología de la mastitis.
Tabla 1. Resultados del diagnóstico de Prueba de
California y Mollicutes
en vacas de rebaños lecheros en Zamora-Chinchipe, Ecuador.
Cantones |
Prueba California |
Mollicutes |
Total |
||||
++ |
+++ |
Total Pos. |
Total Neg. |
Pos. |
Neg. |
||
C. del Cóndor |
4 (100,0) |
0 |
4 (100,0)a |
0 |
1 (25,0)d |
3 (75,0) |
4 |
Paquisha |
6 (75,0) |
0 |
6 (75,0)ab |
2 (25,0) |
0 |
8 (100,0) |
8 |
Nangaritza |
30 (73,2) |
3 (7,3) |
33 (80,5)b |
8 (19,5) |
21 (51,2)b |
20 (48,8) |
41 |
Zamora |
20 (62,5) |
4 (12,5) |
24 (75,0)b |
8 (25,0) |
11 (34,4)c |
21 (65,6) |
32 |
Chinchipe |
1 (33,3) |
0 |
1 (33,3)b |
2 (66,7) |
1 (33,3)d |
2 (66,7) |
3 |
Yacuambi |
3 (60,0) |
1 (20,0) |
4 (80,0)ab |
1 (20,0) |
0 |
5 (100,0) |
5 |
Yantzatza |
104 (67,5) |
25 (16,2) |
129 (83,8)b |
25 (16,2) |
48 (31,2)a |
106 (68,8) |
154 |
168 (68,0) |
33 (13,4) |
201 (81,4) |
46 (18,6) |
82 (33,2) |
165 (66,8) |
247 |
abcd Letras desiguales en las columnas indican
diferencias significativas (p<
0,05).
Así, la investigación bacteriológica detectó Streptococcus spp. (27,2%)
y Staphylococcus aureus (S. aureus) (22,6%) con
las frecuencias mayores y sin diferencia entre ambas. También se observó
infección bacteriana simultánea de diversos agentes bacterianos, un indicador
de la participación de algunos patógenos secundarios, como coliformes
y Proteus spp. que pueden actuar como predisponentes para la
colonización posterior de patógenos mayores. Por ejemplo, coliformes
se diagnosticó junto a S. aureus en el 10,5% de las vacas (Tabla 2).
Tabla
2. Resultados bacteriológicos en leche de vacas en ordeño de rebaños lecheros
en la provincia Zamora-Chinchipe, Ecuador.
Patógenos |
Positivos |
% |
Streptococcus spp. |
67 |
27,1a |
Staphylococcus aureus |
56 |
22,6a |
S. aureus y Coliformes |
26 |
10,5b |
Staphylococcus Coagulasa
Negativo |
24 |
9,7b |
Staphylococcus Coagulasa
Positivo |
9 |
3,7c |
Escherichia coli |
7 |
2,8c |
Corynebacterium spp. |
6 |
2,4cd |
Staphylococcus Coagulasa
Negativo y Coliformes |
4 |
1,6cd |
Proteus morgani |
3 |
1,2cd |
Proteus mirabilis |
1 |
0,4d |
Negativo |
44 |
18 |
Total |
247 |
100,0 |
Patógenos tales como Staphylococcus, Streptococcus, y coliformes se
señalan como los más comunes asociados a mastitis (Ruegg,
2017).
Los
resultados obtenidos coinciden en señalar a S.
aureus como uno de los patógenos de mayor
ocurrencia e importancia en mastitis (Janus et
al., 2023; Heikkilä et al., 2018; Kirkeby et al., 2019; Sing
et al., 2023; Woudstra
et al., 2023). Aquí se
coincide sobre la ocurrencia de S. aureus y diferentes especies de Streptococcus como lo más común.
Es importante señalar que la razón de
prevalencia (RP) de Staphylococcus coagulasa negativo (SCN) (9,7%)
prácticamente no difiere respecto a S. aureus (22,6%) (Tabla
3). El grupo SCN se considera también un emergente
mundial de mastitis, y su mayor detección se ha asociado a la disminución de
patógenos mayores como Streptococcus agalactiae y S. aureus,
aunque no todas las especies del grupo tienen un impacto negativo en el
incremento de las células somáticas y la calidad de la leche, ya que otras
parece que solo cohabitan la piel de los pezones (Cameron et al., 2017).
Tabla 3. Comparación entre las frecuencias observadas
para los diferentes patógenos identificados en leche de vacas de rebaños
lecheros en Zamora-Chinchipe.
Patógeno |
B |
E.E. |
P
valor |
RP |
I.C. 95% |
|||||||
Inferior |
Superior |
|||||||||||
Staphylococcus aureus |
Categoría de
referencia |
|||||||||||
Staphylococcus coagulasa negativo |
,624 |
,320 |
,051 |
1,867 |
,997 |
3,495 |
||||||
Staphylococcus coagulasa positivo |
,245 |
,223 |
,271 |
1,278 |
,826 |
1,976 |
||||||
Coliformes |
1,344 |
,458 |
,003 |
3,833 |
1,561 |
9,414 |
||||||
Streptococcus spp. |
-,511 |
,730 |
,484 |
,600 |
,143 |
2,511 |
||||||
Escherichia coli |
1,022 |
,275 |
,000 |
2,778 |
1,621 |
4,761 |
||||||
Corynebacterium spp. |
1,792 |
1,080 |
,097 |
6,000 |
,722 |
49,837 |
||||||
Nota: B=
Coeficiente Beta; EE= Error estándar; RP=Razón de prevalencias; IC95%=
Intervalo de Confianza del 95%.
En el 2017, un estudio realizado en la provincia El Oro,
Ecuador, reveló una prevalencia de 11.6% de mastitis clínica (MC) moderada y
60% de mastitis subclínica (MSC). En los
casos de MC se revelaron coliformes (33%), Staphylococcus coagulasa positiva
(25,8%), Staphylococcus coagulasa
negativa (20,4%), streptococos (9.7%), Bacillus spp. (7.5%) y
Klebsiella spp (3.2%). En los casos de MSC, se identificaron staphylococos coagulasa negativa
(55.4%), Bacillus
spp. (22.1%), streptococos
(9.3%), y staphylococos coagulasa
positiva (6.1%) (Amer et al., 2018). En contraste, en Zamora-Chinchipe se reveló menor
infección por SCN (10%).
Mientras Streptococcus agalactiae (29,8%), Streptococcus pyogenes (11,7%) y Corynebacterium spp. (5,9 %) fueron los patógenos más frecuentes en ganado
lechero del norte de Antioquia, Colombia (Ramírez et al., 2018).
No
obstante, se entiende que al comparar resultados entre diferentes estudios es
necesario tener en cuenta otros muchos factores que influyen en la prevalencia
de mastitis, pues el conjunto de los que son propios de cada rebaño
probablemente es lo más influyente en la prevalencia de la infección (Dahl et al.,
2017), pues la mastitis es una enfermedad multifactorial, vinculada a la triada
epidemiológica: animal (huésped), agente etiológico y ambiente (Boas da Silva et al., 2023).
De
particular importancia es la relación entre el diagnóstico de Mollicutes y de otros patógenos identificados en
los procesos de mastitis (χ2= 0.042). Se comprobó que S. aureus es
el patógeno con mayor presencia en coinfección con Mollicutes,
seguido por Streptococcus spp., aunque
con un margen amplio de diferencia, en tanto el resto de los agentes
identificados no difieren entre sí para esa condición (P<0,05) (Tabla 4).
Tabla
4. Resultados bacteriológicos y su relación con el diagnóstico de Mollicutes en
leche de vacas en rebaños de Zamora-Chinchipe.
Patógeno (P) |
Diagnóstico de Mollicutes |
Total |
|
Cantidad de
positivos (%) |
Cantidad de
Negativos |
||
Staphylococcus aureus |
36 (43,80)a |
46 |
82 |
Streptococcus spp. |
18 (21,95)b |
50 |
68 |
Staphylococcus coagulasa negativo |
6 (7,32)c |
23 |
29 |
Staphylococcus coagulasa positivo |
5 (6,10)c |
3 |
8 |
Escherichia. coli |
1 (1,22)c |
6 |
7 |
Corynebacterium spp. |
1(1,22)c |
5 |
6 |
Proteus morgani |
0 |
3 |
3 |
Proteus mirabilis |
0 |
1 |
1 |
Negativo |
15 (18,29) |
28 |
43 |
Total |
82 |
165 |
247 |
abc Letras desiguales indican
diferencia significativa, χ2= 0.042 (P<
0,05).
La elevada frecuencia de S.
aureus en los cuadros de mastitis no solo
constituye una amenaza para la salud animal en la provincia, sino también para
la salud pública, pues se conoce su asociación con la emergencia de la
resistencia antimicrobiana y su posible carácter zoonótico
(Majumder et
al., 2023).
La patogénesis de S. aureus es un proceso dinámico que descansa en numerosos
factores, como la composición genética y la respuesta inmune del hospedero, las
condiciones geográficas, los factores de virulencia y la variabilidad genética
de la bacteria (Sivakumar et al., 2023).
La asociación del diagnóstico de Mycoplasma spp. con otros patógenos mayores en los
procesos de mastitis en la provincia, y en mayor frecuencia con S. aureus (χ2= 0.042, P<0.05), reviste gran importancia, pues,
aunque este patógeno se identificó en el 22,6% de las
muestras de leche de las 247 vacas investigadas, en coinfección
con Mycoplasma
spp. su participación se incrementó al 43,8%.
El rol potencial de Staphylococcus
spp. en las mastitis crónicas y recurrentes de
difícil pronóstico y difíciles de tratar con antibióticos (Mphahlele
et al., 2020; Janus
et al., 2023, Walzl
et al., 2023) es un factor relevante
al analizar su coinfección con Mollicutes
en el presente estudio.
Los micoplasmas
tienen un patrón de resistencia amplio, pues no son sensibles a los antimicrobianos
ß-lactámicos y las sulfonamidas, y solo son
generalmente susceptibles a las drogas que interfieren con las proteínas
(tetraciclinas, macrólidos, linosamidos
y florfenicol) o la síntesis de DNA (fluoroquinolonas) (Maunsell
et al., 2011).
A su vez la resistencia de Staphylococcus aureus a los
antimicrobianos, combinado con sus factores de virulencia, los mecanismos
insuficientes de eliminación de los hospederos y la evasión a la respuesta
inmune, inciden en que el patógeno pueda sobrevivir por períodos prolongados de
tiempo en los hospederos (Walzl et al., 2023).
Aislados de S. aureus en leche de vacas con mastitis han mostrado
elevada incidencia de factores de virulencia con importante papel en la
patogénesis de la enfermedad. Así, algunos de esos aislados se observan en
rebaños cercanos, y se sugiere su vinculación a través de prácticas de manejo
deficientes de los productores, la existencia de patógenos comunes en la misma
área, la alimentación y el pastoreo conjunto de animales sanos y enfermos, y el
comercio de animales entre rebaños (Sing et al., 2023).
De manera que la coinfección de Mollicutes y S. aureus puede complicar el curso del proceso infeccioso
en la ubre, comprometer su recuperación satisfactoria, y por tanto ser uno de
los factores no identificados que incida en el curso epidemiológico
desfavorable de la enfermedad en los rebaños y los fallos en su control en
muchos lugares, como puede ocurrir en Zamora-Chinchipe.
Se reconoce que Mycoplasma spp.
puede actuar como agente secundario que exacerba las infecciones preexistentes,
pero también se ha señalado como agente primario que facilita la infección
posterior con otros patógenos frecuentes en los cuadros de mastitis bovina (Deeney et
al., 2021). En este sentido, entre las áreas prioritarias de
investigación básica respecto a M. bovis la necesidad de profundizar en la importancia de
la coinfección con otros patógenos en relación con la
progresión de la enfermedad por ese patógeno (Maunsell
et al., 2011).
El control de las mastitis por M. bovis falla
regularmente cuando se basa solo en la detección de las infecciones intramamarias y la prevención de la transmisión vaca-vaca
en el ordeño, porque a su recurrencia debido a la presencia de portadores
asintomáticos, se suman la transmisión y diseminación del patógeno por rutas
adicionales a la mamarias, como son los aerosoles y la vía hematógena a partir
de otras localizaciones del agente en la anatomía animal (Zadoks
et al., 2011). También por su sobrevivencia fuera del animal, porque
puede persistir durante largos periodos de tiempo en estiércol, agua, arena y
distintos materiales de la cama y convertirlo en un patógeno recurrente (Justice et al.,
2011). Es por ello que incluso se recomienda intentar la eliminación de los casos de mastitis
por M. bovis
mediante el sacrificio (Maunsell et al., 2011).
Es importante destacar que para el sector lechero en su
conjunto, la mastitis por S. aureus ocasiona las mayores pérdidas de leche debido a
la amplia diseminación del patógeno y las pérdidas moderadas tanto por procesos
de mastitis clínica como subclínica (Heikkilä et al., 2018).
Identificar los patógenos asociados a mastitis en los rebaños
es relevante para enfrentar su control, y en particular la conducta terapéutica
a seguir. Con la intención por disminuir los riesgos de la resistencia
antimicrobiana, en la actualidad se insiste en identificar si los patógenos
presentes no ocasionan perjuicios productivos y hasta desaparecen en poco
tiempo de la glándula mamaria, para solo indicar tratamiento con antibióticos
en casos necesarios (Ruegg, 2018). Por lo tanto, es
fundamental la detección de los patógenos presentes en cada rebaño, y evaluar
su sensibilidad a los antibióticos, como parte de la estrategia de control de
las mastitis (Hossain et al., 2017).
La coinfección
predominante entre Mycoplasma
spp y S. aureus en los casos de mastitis subclínica en los
rebaños investigados es evidencia de la repercusión que otros micoplasmas diferentes a M. bovis pueden tener en la manifestación
de la enfermedad en los rebaños bovinos lecheros de Zamora-Chinchipe, por lo
que se precisan más investigaciones para dilucidar las especies de mollicutes presentes y el papel de su coinfección
con otros patógenos en los fallos en el control de la enfermedad.
CONCLUSIONES
La elevada frecuencia en vacas de la coinfección
de Mollicutes con Staphylococcus aureus (43,80%)
puede ser la causa del comportamiento clínico-epidemiológico desfavorable de la
enfermedad en rebaños bovinos lecheros de Zamora-Chinchipe. También constituye
una alerta sobre el papel que pueden tener otras especies de micoplasmas diferentes a M. bovis en el control de la mastitis,
dada su resistencia reconocida a los antimicrobianos y el incremento de esta en
otros patógenos mayores.
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Concepción y diseño de la investigación: NRS, LRS, ELR, MIPA;
análisis e interpretación de los datos: NRS, LRS, ELR, APC, MIPA; redacción del
artículo: NRS, LRS, ELR, MIPA.
Los autores declaran que no existen conflicto de intereses.