Genética y Reproducción
Original
Caracterización morfométrica y seminal de
reproductores de Clarias gariepinus en
épocas pre-reproductiva y reproductiva
Morphometric and Seminal Characterization of Clarias gariepinus Breding Stock at the Pre-Breding
and Breeding Stages
Anaysi Portales González *, María Teresa García de la Cruz **, Mirta Vinjoy Campa **, Lisbani Interian Álvarez *
*Centro de Investigaciones para el Mejoramiento Animal de la Ganadería Tropical (CIMAGT), Loma de Tierra, Cotorro, La Habana, Cuba.
**Empresa de Desarrollo de Tecnologías Acuícolas (EDTA), UDI ¨El Dique¨, Loma de Tierra, Cotorro, La Habana, Cuba.
Correspondencia: aportales@cima-minag.cu
Recibido: Octubre, 2022;
Aceptado: Noviembre, 2022; Publicado:
Diciembre,
2022.
Antecedentes: La reproducción artificial en Clarias gariepinus implica sacrificar el macho;
se precisa conocer las características físicas del semen y sus variaciones,
para su conservación en época pre-reproductiva y su aprovechamiento en la
campaña de reproducción. Objetivo. Caracterizar
los cambios morfométricos y la calidad seminal en Clarias gariepinus durante
las épocas pre-reproductiva (EPR) y reproductiva (ER). Métodos: Se evaluaron 42 reproductores machos, en ambas épocas, mediante los indicadores peso (PV) (kg),
largo (LT) (cm), peso gonadal (PG) y de vesículas seminales (PVS) (g), factor
de condición (FC), índices gonadosomático (IGS) y
vesículas seminales-somático (IVS-S). Se colectaron muestras de semen
testicular (ST) y semen testicular-plasma seminal (ST-PS), con evaluación del
color, consistencia, volumen seminal testicular (VST) y del plasma seminal
(VPS) (ml), motilidad (%), tiempo de activación
espermática (TAE) (sg), concentración espermática
(CE) (x109 sptz/ml) y espermatocrito
(SPCTO) (%). Se realizó un análisis de varianza de dichas variables
considerando la época como fuente de variación y un análisis de correlación de
Pearson. Resultados: Se
incrementaron significativamente (P<0,05) el PV, PG e IGS en ER. El VST y
VPS fueron inferiores en EPR, con mayor CE. El semen cremoso mostró elevadas CE
(21,14 ± 2,90 x 109 sptz/ml) y SPCTO
(19,50 ± 1,24 %); cuya correlación fue moderada (r=0,58, P<0,001). Conclusiones: Se deben descartar los
reproductores machos con bajo IGS y semen acuoso, por su baja densidad celular.
Es posible predecir la CE a través del espermatocrito y disponer de semen de
buena calidad en EPR para su conservación.
Palabras
clave: Clarias gariepinus,
características seminales,
época, Morfometría (Fuente: MeSH)
Background: Artificial breeding of Clarias gariepinus entails
sacrificing the male, which is necessary to know the semen’s physical features
and variations for preservation during the pre-breeding stage, and its
utilization for the breeding stage. Aim. To characterize the
morphometric changes and seminal quality of Clarias
gariepinus during the pre-breeding (PRS) and
breeding (BS) stages. Methods: A number of 42 breeding males were
evaluated in the two stages, using weight (LW) (kg), length (LT) (cm), gonadal
weight (GW), and seminal vesicles (SVW) (g), condition factor (CF), gonadosomatic index (GSI), and seminal-somatic vesicles
index (S-SVI). Samples from testicle’s semen (TS) and seminal plasma/testicle’s
semen (SP-TS) were collected. Their color, testicle seminal volume (TSV), and
seminal plasma volume (SPV) (ml), motility, sperm
activation time (SAT) (sec), sperm concentration (SC) (x109 sptz/ml), and spermatocrits
(SPCTO) (5), were evaluated. An analysis of variance of the variables was
conducted, considering the time as the variation source, along with a Pearson
correlation analysis. Results: The LW, GW, and SGI increased
significantly (P<0.05) during the BS). The TSV and SPV were lower in the
PBS, with a higher SC. The creamy semen showed high SC (21.14 ± 2.90 x 109
sptz/ml) and SPCTO (19.50 ± 1.24 %), whose
correlation was moderate (r=0.58, P<0.001). Conclusions: The
breeding males with low SGI and aqueous semen should be rejected due to their
low cellular density. SC can be predicted through the spermatocrit,
so that high-quality semen can be available during the PBS through
conservation.
Keywords: Clarias gariepinus,
seminal
features, stage, morphometry (Source: MeSH)
INTRODUCCIÓN
La acuicultura registra un incremento
en la productividad a nivel mundial; en la cual se manifiesta la contribución
del pez gato africano, Clarias gariepinus, que
reemplazó a la tilapia al ser el pez más cultivado desde el 2004 en África
(FAO, 2012) y de marcada influencia en el rápido crecimiento del sector en
Nigeria (Jimoh et al., 2021). Se considera uno de los peces gato tropicales más importantes
en la acuicultura en Asia e incluso en Europa (Viveiros,
So y Komen, 2000; Okoye et al., 2017) y actualmente se cultiva
en sistemas modernos con recirculación de agua en Holanda (Fleuren,
Nooijen y Roosendaal,
2013). En Cuba, ocupa el segundo lugar en las producciones dulceacuícolas,
debido a su alta tasa de crecimiento, resistencia a condiciones ambientales y
reproducción continua (De Graaf, Galemoni
y Banzoussi, 1995).
El desove inducido implica sacrificar
al macho para recolectar el semen de los testículos (Steyn
y Van Vuren, 1987) lo que permite disponer de una
cantidad de esperma limitada (Viveiros, So y Komen, 2000; Mansour, Lahnsteiner y Patzner, 2002). La colección seminal por masaje abdominal
es casi imposible ya que la presión digital hará que el semen se mueva hacia la
vesícula seminal y no a través del poro de la papila genital (De Graaf, Galemoni y Banzoussi, 1995; Viveiros et al., 2002). Se necesita disponer de
semen con buena calidad para incrementar la eficiencia de la fertilización
artificial en las especies piscícolas, para lo cual se requiere emplear
reproductores machos con alta viabilidad espermática y alto volumen seminal
(Solomon et al., 2015), pues se
reconocen variaciones en la calidad del semen testicular entre machos (Mansour, Lahnsteiner y Berger, 2004). Por consiguiente, la
determinación de los parámetros de calidad espermática del semen fresco es un
prerrequisito para la evaluación satisfactoria de su capacidad reproductiva,
puede ayudarnos a mejorar la reproducción artificial en granjas de peces (Alavi et al., 2009).
La capacidad del espermatozoide de
fertilizar el ovocito es el principal factor que afecta las tasas de
fertilización. Tal capacidad depende de parámetros cualitativos y cuantitativos
tales como el volumen, la concentración, la motilidad, la viabilidad y la
morfología espermática (Bustamante-González et
al., 2016), de los cuales el volumen indica la eficiencia, y la
concentración junto a la motilidad determinan la capacidad de fertilización del
espermatozoide (Cabrita et al.,
2014), debido a que las propiedades químicas del fluido seminal garantizan que
los espermatozoides de los peces permanezcan inmóviles en dicho fluido (Coward, Campos y Parrington,
2008).
El objetivo de este trabajo fue
caracterizar los cambios morfométricos y la calidad
seminal en Clarias gariepinus durante
las épocas pre-reproductiva y reproductiva.
MATERIALES Y MÉTODOS
Localización
Se trabajó con el banco
de reproductores del pez gato africano Clarias gariepinus (Burchell 1822) de
la Unidad de
Desarrollo e Innovación (UDI) ¨El Dique¨, de la Empresa de Desarrollo de
Tecnologías Acuícolas (EDTA).
Manejo de los
reproductores
Los reproductores se mantuvieron en
un estanque de concreto con circulación continua de agua y alimentación diaria
con pienso comercial (36 % proteína bruta, PB y 2 964 Kcal/kg energía
digestible, ED), al 1 % de la biomasa.
Diseño
experimental y animales muestreados
Para el estudio se emplearon 42
reproductores machos seleccionados al azar, de 2 años de edad promedio, 23 en
época pre-reproductiva y 19 en época reproductiva, con colecta de muestras de
semen testicular (ST) y semen testicular más plasma seminal (ST-PS) en ambos
períodos, como se describe en acápite ¨Colección del semen testicular y del
plasma seminal¨.
Morfometría
Se evaluaron los indicadores morfométricos: peso vivo (PV, kg), largo total (LT, cm),
peso de las gónadas (PG, g) y peso de las vesículas seminales (PVS, g). Para
determinar el estado general de desarrollo del pez se utilizó el factor de
condición (FC) de Fulton (1902), calculado mediante
la fórmula:
PV
FC =
------ x 100
LT3
Se calculó el índice gonadosomático (IGS) (Ferrer, 1988) para determinar la madurez
de las gónadas y el índice vesículas seminales-somático (IVS-S) (Viveiros, Eding y Komen, 2001) mediante las fórmulas:
PG PVS
IGS (%) = ----- x 100 e
IVS-S (%) = ------- x 100
PV PV
El pesaje se realizó mediante dos
balanzas digitales marca GRAM, con capacidades de 60 kg y 1 kg. Para medir el
largo del pez se utilizó un ictiómetro.
Colección del
semen testicular y del plasma seminal
La colección seminal se realizó en
tubos aforados plásticos, inmediatamente después de sacrificados los animales,
mediante disección del abdomen y extracción de los testículos (Elizarde et al., 2007).
Para la colecta del semen testicular y del plasma seminal se realizaron
múltiples cortes a los testículos y vesículas seminales con extensiones en
formas de dedos, respectivamente. El material obtenido se filtró con malla de
zooplancton (200 µm). Las muestras se conservaron a 4°C
hasta su evaluación macro y microscópica dentro de 3 horas posteriores a la
extracción.
Caracterización
física del semen
Se caracterizaron las
muestras en cuanto a: color, consistencia, volumen seminal testicular (VST, ml)
y volumen del plasma seminal (VPS, ml). Se realizó la evaluación subjetiva de
la motilidad (%) en
la escala de 5 puntos de 0 a +4 propuesta por Ninhaus-Silveira et al. (2006), mezclando una gota de
semen fresco con una gota de agua destilada, la cual se observó al microscopio
usando lentes 10x y 40x. Posteriormente se evaluó el tiempo de activación
espermática (TAE, sg) mezclando una gota de semen con
agua común para la activación de la motilidad (López-Hernández et al., 2018). Se determinó la
concentración espermática (CE, x109 sptz/ml)
mediante una dilución 1:800 (0,01 ml de semen en 8 ml de solución salina al 3
%) realizando el conteo por duplicado en cámara de Neubauer
con objetivo 40X, promediando las dos lecturas, según metodología tradicional
utilizada para el recuento hematológico descrito por Oppenheim
(1973). Por último, se determinó el valor del espermatocrito (SPCTO, %)
mediante centrifugación de las muestras por duplicado durante 20 minutos a 3500
r.p.m. en centrífuga de microhematocrito marca Hawkley (Portales et
al., 2021).
Análisis
estadísticos
Los datos se analizaron obteniéndose
los estadígrafos generales para las características morfométricas y físicas del
semen y el plasma seminal. Se realizaron análisis de varianza con el modelo
lineal general (GLM) para dichas características, considerando como fuente de
variación la época de extracción de las muestras. A los datos de motilidad y
espermatocrito se les halló el logaritmo natural para su transformación antes
de su procesamiento. Se realizó un análisis de correlación de Pearson. Todos
los análisis estadísticos se realizaron con MINITAB (2019).
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Indicadores morfométricos
Se encontraron diferencias
significativas (p<0,05) en los indicadores PV, PG e IGS de los reproductores
machos de Clarias gariepinus, a
favor de la época reproductiva (Tabla 1).
Zacariah et al. (2016) también detectaron órganos reproductores más pequeños
durante el período pre-reproductivo en esta especie mientras otros investigadores
no encontraron diferencias en el peso de los testículos entre épocas en C. gariepinus silvestres
(Idahor et al.,
2014; Yusuf et
al., 2015; Ali et al., 2022).
Aunque las diferencias estacionales no
están bien definidas, se asocian con factores ambientales tales como:
temperatura, disponibilidad del alimento, lluvias y fotoperiodo. Este pez muestra ciclo reproductivo
discontinuo en su hábitat natural, influenciado por los cambios circadianos en
la temperatura del agua y la fotoperiodicidad (Olaleye, 2005), con el incremento en el nivel del agua
debido a las precipitaciones como mecanismo de activación para el desove. El
peso corporal de los reproductores juega el mayor papel en el período de
maduración espermática, y existe un amplio rango en el número de
espermatozoides producidos, por lo cual se asocia el incremento en el peso
testicular al mismo tiempo que el peso corporal, constituyendo un buen
indicador de la eficiencia de la espermatogénesis (Bromage y Roberts, 1995; Jimoh et al., 2021) y de la cantidad de
esperma producido (Billard, 1986; Ali et al., 2022).
Tabla 1. Rasgos morfométricos,
índices somáticos y cambios en el aparato reproductor masculino entre épocas
pre-reproductiva (N=23) y reproductiva (N=19).
Rasgos |
Época
pre-reproductiva (febrero-marzo) |
Época
reproductiva (junio) |
p |
||||
M
± ES |
DS |
CV |
M
± ES |
DS |
CV |
||
PV (kg) |
2,14 ± 0,11 |
0,51 |
24 |
2,47 ± 0,10 |
0,45 |
18 |
p<0,05 |
LT (cm) |
71,3 ± 1,90 |
9,09 |
13 |
73,05 ± 0,79 |
3,43 |
5 |
ns |
PG (g) |
23,42 ± 2,58 |
12,37 |
53 |
34,74 ± 3,37 |
14,67 |
42 |
p<0,05 |
PVS (g) |
13,73 ± 1,74 |
8,37 |
61 |
17,37 ± 1,85 |
8,06 |
46 |
ns |
FC |
0,61 ± 0,04 |
0,17 |
28 |
0,64 ± 0,03 |
0,12 |
19 |
ns |
IGS |
1,06 ± 0,08 |
0,37 |
35 |
1,41 ± 0,12 |
0,53 |
38 |
p<0,05 |
IVS-S |
0,65 ± 0,08 |
0,36 |
56 |
0,70 ± 0,07 |
0,30 |
42 |
ns |
Leyenda: PV: peso
vivo, LT: largo total, PG: peso de las gónadas (testículos), PVS: peso de
vesículas seminales, FC: factor de condición de Fulton,
IGS: índice gonadosomático, IVS-S: índice vesículas
seminales-somático, p: nivel de significación, ns:
diferencias estadísticamente no significativas.
En reproductores machos de Clarias gariepinus cultivados
en Nigeria de peso corporal 2,54 ± 0,12 kg, Jimoh
et al. (2021) encontraron un peso
gonadal total e IGS en el rango de los hallados en el presente estudio (27,94 ±
8,17 g y 1,15 ± 0,38, respectivamente), aunque el factor de condición fue
superior (0,84 ± 0,07). Los autores consideraron que el IGS y los rasgos
reproductivos del macho explicarían la diferencia en el rendimiento
reproductivo y la producción de semillas en cautiverio. Kumari (2014) demostró que existe una
correlación positiva entre el peso testicular y la producción seminal; por lo
cual el IGS se emplea para estimar el comportamiento reproductivo del pez. En ambas épocas este índice
fue superior a 1; por lo que nuestros resultados
contradicen los hallazgos de Urbányi et al. (1999), quienes refirieron que
muchos silúridos incluyendo Clarias gariepinus son oligospérmicos
(bajo recuento de espermatozoides) (IGS<1) y que el volumen colectado es
generalmente bajo, aún con estimulación hormonal.
Por otra parte, el aumento de las VS
no fue significativo y tampoco el IVS-S (0,70 ± 0,07 %), el cual se
correlacionó positivamente con el IGS y con la actividad secretora testicular
en la especie (Singh y Joy, 1999). El IVS-S fue
superior a los referidos por Viveiros, Eding y Komen (2001) (0,29 ± 0,06
%) en machos con vesículas seminales bien desarrolladas con extensiones largas
en forma de dedos a cada lado de los conductos espermáticos y tambien a los valores encontrados por Amer
et al. (2005) (0,2 - 0,4 %).
Calidad seminal
Durante la extirpación de los
testículos, se pudo apreciar su aspecto lobular, turgencia y color blanquecino
(Figura 1A), asociados con los testículos tipo I o maduros (Mansour
et al., 2004) productores de semen de
excelente calidad; apariencia similar manifestaron las gónadas masculinas de C. gariepinus silvestres
de un lago en Nigeria, durante la época de desove (Ali et al., 2022). Las glándulas
genitales accesorias (vesículas seminales) presentaron múltiples lóbulos y
produjeron una secreción altamente viscosa y rosada, en correspondencia con lo
referido para la familia Clariidae (Van der Hurk,
Resink y Peute, 1987; Singh y Joy, 1999).
Adicionalmente, se apreciaron
testículos atrofiados, principalmente en la EPR (Figura 1B) y un caso
patológico en ER (Figura 1C). Los testículos patológicos mostraron aumento de
tamaño (60 g) y coloración grisácea, con un PVS de 30 g. El semen extraído
mostró consistencia acuosa y transparencia, con un VST de 40 ml y VPS de 8 ml,
superiores al promedio; con mala calidad (20 % de motilidad, CE de 2,4 x 109
sptz/ml y SPCTO de 2,4 %). A su vez, el perfil
bioquímico del pez mostró valores altos de triglicéridos (36,28 mg/dL) y glucosa (13,69 mg/dL) en
sangre, reflejando alteraciones metabólicas.
AB
C
Figura 1. Testículos y vesículas
seminales de reproductores de Clarias gariepinus: A. Testículos maduros tipo I, B. Testículos
atrofiados y vesículas aumentadas de tamaño, C. Testículos asociados a mala
calidad seminal (caso patológico).
En general, el ST obtenido en ambas
épocas mostró color blanco y consistencia lechosa, aunque se evidenciaron
muestras con consistencia cremosa en EPR; coincidiendo con los
parámetros observados en épocas de no desove y desove en C. gariepinus silvestres (Ali et al., 2022). El VST producido es elevado,
consistente con los obtenidos en reproductores cultivados en Nigeria (17,69
ml); lo que indica que se requieren menos machos para fertilizar los huevos,
debido a su abundante producción de semen (Jimoh et al., 2021).
Se observó una relación fisiológica
entre la consistencia seminal y el VST, la CE y el SPCTO (Figura 2). El VST se
redujo a medida que la consistencia cambió de acuosa a lechosa y cremosa. Se
asoció un semen cremoso con la mayor densidad celular (21,14 ± 2,90 x 109/ml
y 19,50 ± 1,24 % de SPCTO) en comparación con el semen acuoso (3,27 ± 0,87 x 109/ml
y 4,30 ± 1,90 %).
ml
Figura 2. Indicadores de calidad seminal
asociados a la consistencia del semen testicular.
Existen antecedentes
que confirman la variación del espermatocrito y la viscosidad (consistencia)
del semen entre machos, entre especies y a través de la época reproductiva
(Rakitin, Ferguson y Trippel, 1999; Ali et al., 2022).
En concordancia con estos autores, ésta especie puede producir gran número de
semillas, así como es posible colectar semen de buena calidad en épocas de
desove y no desove y emplear como criterio a priori la consistencia en la evaluación del semen
durante las campañas de reproducción para descartar semen acuoso.
Esta
especie, en ambientes naturales en Nigeria, mostró CE y VS inferiores (2,9 ±
0,4 y 2,6 ± 0,4 x 109/ml, 3,6 y 3,3 ml), en épocas de desove y no
desove, respectivamente; relacionado con el menor peso de los reproductores
(994,8 y 898,6 g) ya que peces con mayor peso produjeron los mayores volúmenes
seminales (Ali et al., 2022). En
general, existen variaciones en el número de espermatozoides entre especies de peces (2 x 106
a 5,3 x 1010), lo cual está relacionado con la estación
reproductiva, el tratamiento hormonal, los porcentajes de fecundación, la
disponibilidad y propiedades nutricionales del alimento y la calidad del agua (Murakami et al.,
2014; López-Hernández et al., 2018).
En el presente estudio encontramos
recuentos de espermatozoides superiores a los referidos por Viveiros, So y Komen (2000); Yusuf
y Ilker (2017) y Okoye et al. (2017) e inferiores a los encontrados por Solomon et al. (2015) (35 - 97 × 109 sptz/ml), en éste último caso atribuidos al pico de la
época de apareamiento. Ali et al. (2022)
obtuvieron esperma también en época de no desove; incluso el semen lechoso
obtenido tuvo una concentración media dentro del rango normal (1,8 - 7,2 x 109/ml),
acorde lo referido por Viveiros, So y Komen (2000) y Yusuf y Ilker (2017) en el pez
gato africano en Turquía. Esto se puede atribuir al hecho que los testículos de
Clarias gariepinus macho
están completamente desarrollados una vez que alcanzan aproximadamente los 200
g de peso (De Graaf y Janssen,
1996; Ali et al., 2022).
Por otra parte, no se encontraron
diferencias en la motilidad, el SPCTO y el TAE entre ambos períodos,
consistentes con semen de buena calidad. Los menores VST y VPS se obtuvieron en
EPR, relacionados con una mayor CE (Tabla 2). El incremento del VS en ER se
atribuye a la presencia de testículos maduros tipo I y al incremento en el PG y
PVS. La actividad secretora de las VS de Clarias
gariepinus es estimulada por la testosterona
(Singh y Joy, 1997) y su apareamiento es estacional;
el nivel de actividad testicular y espermatogénesis dependen mayormente del
período de luz y la temperatura (Garg y Sundararaj, 1985).
Tabla 2. Comparación de las
características físicas del semen y plasma seminal de los reproductores de Clarias gariepinus entre
épocas.
Características seminales |
Época pre-reproductiva |
Época reproductiva |
p |
M ± ES |
M ± ES |
||
VST
(ml) |
11,10 ± 1,82 |
23,57 ± 2,25 |
p<0,001 |
VPS
(ml) |
0,86 ± 0,28 |
1,93 ± 0,35 |
p<0,05 |
Motilidad
(%) |
66,72 ± 6,17 |
79,74 ± 4,92 |
ns |
CE
(x109 sptz/ml) |
19,08 ± 1,43 |
13,39 ± 1,60 |
p<0,05 |
SPCTO
(%) |
16,9 ± 1,07 |
13,8 ± 1,21 |
ns |
TAE
(sg) |
40,1 ± 2,54 |
35,6 ± 2,86 |
ns |
Leyenda: VST:
volumen de semen testicular, VPS: volumen de plasma seminal, CE: concentración
espermática, SPCTO: espermatocrito, TAE: tiempo de activación espermática.
En Clarias gariepinus se identifican diferentes
estadios de maduración gonadal, entre machos y también en el mismo testículo de
un pez durante el desove natural. Esto afecta la consistencia, el volumen y la
densidad espermática pero no la motilidad (Mansour et al., 2004). Este indicador no mostró
diferencias significativas entre las dos épocas y se considera el mejor biomarcador de la calidad del semen,
relacionado con la capacidad de fertilización (Oguntuase
y Adebayo, 2014).
En contraste con otros indicadores,
el TAE coincide con la duración de la motilidad espermática de 40 segundos
referida por Mansour et al. (2004), la cual disminuyó alrededor del 50 % al transcurrir
la mitad de ese tiempo; y concuerda con el tiempo referido en el bagre rayado Pseudoplatystoma metaense (39,5
segundos) por Ramírez-Merlano, Medina-Robles y Cruz-Casallas (2011). Su brevedad se asocia con el corto tiempo
del que disponen los espermatozoides inmóviles para activarse al ponerse en contacto
con el agua, mediante la adquisición de movilidad y velocidad de desplazamiento
progresivo para lograr la fertilización, antes de que las ovas liberadas en el
agua se hidraten y cierren su micrópilo; orificio del ovocito por el cual
penetran los espermatozoides para la ocurrencia de la fecundación. Esto se debe
a la ausencia de acrosoma en los espermatozoides de
teleósteos, al contrario de los mamíferos (Quagio‐Grassiotto
et al., 2001). Por tal razón, ambos
gametos se liberan sincronizadamente al medio
acuático, donde se activan y ocurre la fertilización (Dumorne et al., 2018).
Las características
evaluadas permitieron constatar que C. gariepinus
es un pez de
espermiación continua, puede producir semen de alta
calidad durante períodos en que las temperaturas y el fotoperiodo no son
favorables para la reproducción de la hembra. Estos resultados sustentan la
posibilidad de conservar semen en esta etapa puesto a que el desarrollo
asincrónico de la espermatogénesis soporta la espermiación continua en C. gariepinus cultivados, una vez que
pueden iniciar la producción de esperma a los 6 meses de edad, momento en que
se identifican espermatozoides con capacidad
para el movimiento progresivo unidireccional, indicando la madurez sexual del
pez. Sin embargo, factores genéticos y condiciones de cultivo incluyendo
la nutrición influyen en la edad de maduración de los peces cultivados (Okoye et al., 2016). Adicionalmente, los mayores IGS, volumen seminal, CE y SPCTO se
encontraron en machos de 12 meses de edad, con mejora de la calidad seminal en
peces mayores (Okoye et al., 2017),
lo que justifica la elección de los reproductores en este momento.
Correlación entre características
reproductivas y seminales.
En EPR se encontraron las mayores
correlaciones entre rasgos morfométricos y seminales
(Tabla 3).
Tabla 3. Relación entre el peso vivo
del pez, peso de los testículos y vesículas seminales y algunos parámetros del
semen de Clarias gariepinus en
épocas pre-reproductiva y reproductiva.
Parámetros |
Época
pre-reproductiva |
Época
reproductiva |
||
Coeficiente
de correlación de Pearson (r) |
Valor
de p |
Coeficiente
de correlación de Pearson (r) |
Valor
de p |
|
PV – PG |
0,73 |
<0,0001 |
0,24 |
0,34 |
PV –PVS |
0,32 |
0,13 |
0,40 |
0,09 |
PV – VST |
0,71 |
0,0001 |
0,16 |
0,52 |
PV – VPS |
0,12 |
0,64 |
-0,21 |
0,58 |
PG – PVS |
0,31 |
0,14 |
0,42 |
0,08 |
PG – VST |
0,98 |
<0,0001 |
0,92 |
<0,0001 |
PG – VPS |
0,01 |
0,95 |
0,45 |
0,22 |
PG – SPCTO |
0,10 |
0,64 |
-0,31 |
0,21 |
PG – CE |
0,55 |
0,0058 |
-0,09 |
0,72 |
PVS – VST |
0,36 |
0,09 |
0,32 |
0,20 |
PVS – VPS |
0,86 |
<0,0001 |
0,22 |
0.56 |
VST - SPCTO |
0,09 |
0,67 |
-0,45 |
0,06 |
VST - CE |
0,55 |
0,0057 |
-0,15 |
0,55 |
SPCTO – CE |
0,53 |
0,0073 |
0,33 |
0,18 |
Correlación es significativa para
niveles de p<0,05
Hubo una correlación alta y
significativa (p<0,001) entre PV y VST (r=0,71), PG y VST (r=0,98) y entre
el PVS y VPS (r=0,86). Se detectó una correlación moderada y significativa
(p<0,01) entre PG y CE (r=0,55), VST y CE (r=0,55) y entre SPCTO y CE
(r=0,53). Nuestros hallazgos coinciden con los referidos por Yusuf et al. (2015),
quienes encontraron correlaciones positivas pero superiores (r=0,72, p<0,05)
del VS y PG con la CE en reproductores machos cultivados en Nigeria y similares
entre el PG y VST (r=0,98, p<0,01).
En la ER se produjo un desarrollo
aparejado de los testículos y las vesículas seminales, en respuesta a las
condiciones ambientales favorables para la reproducción (incremento del PG,
VST, VPS) y reducción de la CE. Sin embargo, solo mostró correlación
significativa (r=0,92; p<0,0001) el PG con el VST y la asociación entre los
indicadores de densidad espermática (CE y SPCTO) fue baja. La correlación (r=0,16,
p>0,05) entre PV y VST en ER contrasta con los resultados de Ali et al. (2022) en la época de desove de C. gariepinus en
ambientes naturales de Nigeria (r=0,36; p˂0,05). Asimismo, nuestros
hallazgos difieren de éstos autores, quienes encontraron relaciones bajas y no
significativas del peso de los testículos con el VS (r=0,20) y con la CE
(r=0,28).
Los resultados obtenidos permiten
utilizar al SPCTO como un indicador práctico de rápida medición para predecir
la CE en peces solamente en EPR, en concordancia con Rakitin
et al. (1999) y Portales et al. (2021). En otras especies de
aguas frías se refieren correlaciones superiores (r=0,84), como en el pez del
Himalaya Schizothoraichthys progastusis (Agarwal, Vandana y Raghuvanshi, 2013).
CONCLUSIONES
Se deben descartar los reproductores
machos Clarias gariepinus con
bajo índice gonadosomático y semen acuoso, por su
baja densidad celular. Es posible predecir la concentración espermática a
través de la determinación del espermatocrito y disponer de semen de buena
calidad en época pre-reproductiva para implementar técnicas de conservación.
AGRADECIMIENTOS
Los autores deseamos expresar nuestro
agradecimiento a la Lic. Zenaida Arboleya Arrizabalaga, de la UDI ¨El Dique¨ por su apoyo
administrativo incondicional para el desarrollo de estas investigaciones y a la
técnica Dayné Horta Fernández, por su participación
en las tareas de campo.
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Concepción y diseño de la
investigación: APG, MTGC, MVC, LIA; análisis e interpretación de los datos: APG,
MTGC, MVC, LIA; redacción del artículo: APG, MTGC, MVC, LIA.
Los autores declaran que no existen
conflicto de intereses.